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发布日期:2021-12-21 16:22:00

方法汇总

一、 液体样本

液体样本处理原则:所有的液体样本,用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),如果以后碰到其他的液体样本,也按这个方法,纳入汇总表。

1、血清:用无菌管收集,室温血液自然凝固 10-20 分钟,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离心。

2、血浆:应根据标本的要求选择 EDTA、肝素钠或柠檬酸钠作为抗凝剂,混合 10-20 分钟后,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应该再次离心。

3、尿液:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分)。仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

4、胸腹水:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分), 仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

5、脑脊液:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分), 仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

6、唾液:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

7、细胞培养上清:检测分泌性的成份时,用无菌管收集。2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

8、牛奶:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

9、蜂蜜:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

10、全血:用含有抗凝剂的无菌管收集,立即轻轻摇动,来回轻轻颠倒数次,使血液和抗凝剂混匀,以防血液凝固。

 

二、 固体样本

固体样本处理原则:称取 1g 的固体样本,用 9g 的合适缓冲液溶解,分泌蛋白可以直接离心取上清检测,细胞内的蛋白,要先收集细胞,再用合适方法破碎,离心取上清测试。

1、组织标本:切割标本后,称取 1g 组织,加入 9g 的 pH7.2-7.4 左右的 PBS, 用手工或匀浆器将标本匀浆充分。离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细 收集上清。分装一份待检测,其余冷冻备用,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。对于植物组织,不好匀浆的话,就在液氮中充分研磨;

2、细胞内蛋白样本

许多待测蛋白不是分泌蛋白,而是存在于细胞内的蛋白,这个时候,要先收集细胞,洗涤干净,再破碎细胞,离心取上清。

(1)培养的细胞

A、动物细胞:用 PH7.2-7.4 的 PBS 稀释细胞悬液,使细胞浓度达到 100 万/ml 左右。通过反复冻融(如果反复冻融,破碎效果不好,就采用超声波破碎),以使细胞破坏并放出细胞内成份。2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

B、植物细胞:用 PH7.2-7.4 的 PBS 稀释细胞悬液,使细胞浓度达到 100 万/ml 左右,置于冰盒上,用超声破碎仪,设置破碎 2s,冷却 30s 的方式,充分破碎细胞,以使细胞破坏并放出细胞内成份。2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

(2)组织的细胞

切割标本后,称取 1g 组织,加入 9g 的 pH7.2-7.4 左右的 PBS,用手工或匀浆器将标本匀浆充分。2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),去除上清, 再用 pH7.2-7.4 左右的 PBS 小心洗涤沉淀的细胞三遍。再用上述的细胞破碎方法破碎细胞。

3、咽拭子:加入 2g 的 pH7.2-7.4 左右的 PBS,溶解咽拭子头部,摇匀,用镊子取出咽拭子并挤干液体,2-8℃条件离心 20 分钟左右(2000-3000 转/分),仔细收集上清。分装一份待检测,其余冷冻备用,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。如果是测分泌蛋白,直接取上清检测,测试细胞内蛋白,要破碎细胞。

4、植物标本的精采集及保存 1、称取 0.1g(误差±3以内)新鲜植物组织样本, 在液氮中充分研磨;2、加入 1ml 的提取液(80甲醇), 置于-20 度过夜;3、于4 度,8000rpm,离心 1 小时,取上清;4、 上清液过 C-18 固相萃取柱。具体步骤是:80 甲醇(1ml)平衡柱→上样→收集样品→移开样品后用 100甲醇(5ml) 洗柱→100 乙醚(5ml)洗柱→100 甲醇(5ml)洗柱→循环。过柱后的样本真空干燥或氮气吹干,保存备用;5、上样前加入 pH7.4 PBS 缓冲液(1ml 定容)。混匀后室温放置 30 分钟,然后 4 度离心(8000rpm,15 分钟),取上清并暂时 保存于 4 度待用。

5、植物标本中相关酶或蛋白的测定:(粗提取)1、 新鲜植物组织请在液氮中充分研磨;2、 加入样品体积 9 倍的提取液(pH 7.4 PBS 缓冲液),3、 请于 4 度,8000rpm,离心 30 分钟,取上清并暂时保存于 4 度待用。

 

样本收集注意事项

1、不能检测含 NaN3 的样品,因 NaN3 抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。

2、标本采集后尽快进行实验,若不能马上进行试验,可将标本放于-20℃保存, 但应避免反复冻融。

3、我们罗列的是通用的样本处理方法,无法涵盖各种样本,对于一些特殊样本, 建议实验人员多参考已发表的文献,自行设计合理的样本处理方法。

 

计算方法示例

绘制标准曲线:在 Excel 工作表中,以标准品浓度作横坐标,对应 OD 值作纵坐标,绘制出标准品线性回归曲线,按曲线方程计算各样本浓度值。将样本的 OD 值为 X 值代入方程式,所得的 Y 值即是我们的样本值。(如下图所示)

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